1.鲁氏不动杆菌(Acinetobacter lwoffii

物种名:鲁氏不动杆菌

拉丁学名:Acinetobacter lwoffii

分类学地位: 细菌界Bacteria;变形杆菌门Proteobacteria;变形菌纲Gammaproteobacteria;假单胞菌目Pseudomonadales;莫拉氏菌科Moraxellaceae; 不动杆菌属Acinetobacter

鲁氏不动杆菌是一种革兰氏阴性需氧细菌,在皮肤微生物组中很重要,存在于皮肤、口咽部和会阴部的正常菌群中。鲁氏不动杆菌生活在健康人类的皮肤、土壤和植物、冷冻食品和家禽以及人体标本(如血液和尿液)中。然而,它进入血液后很危险,因为它在很大程度上对抗菌素耐药,这意味着它可能变得危险致病。鲁氏不动杆菌是医院样本中最常见的物种之一,仅次于鲍曼不动杆菌。鲁氏不动杆菌在室温下在临床和医院环境中干燥后具有生存和繁殖的能力,通常是医院环境中的感染源。

1.1生物学特性

1.1.2培养特征

鲁氏不动杆菌的生长温度范围在10~37℃之间,最适温度为25~28℃。适合的培养基包括肉汤培养基、血平板、麦康凯平板等。在培养过程中,该菌需氧,不产生色素,无特殊生化反应。在血平板上,鲁氏不动杆菌形成圆形、凸起、光滑、透明且具有蓝黑色中心的菌落。在麦康凯平板上,菌落为粉红色。在显微镜下,鲁氏不动杆菌呈短小杆菌,有时呈长丝状。

1.1.1形态学特征

革兰氏阴性细菌,不运动,这意味着它没有自己的运动机制。鲁氏不动杆菌的形状被描述为球杆菌,介于圆形和棒状之间[1]。在干燥条件下,鲁氏不动杆菌往往以圆形细胞形式存在,甚至可能增加其细胞壁的厚度[2]

图1 鲁氏不动杆菌显微照片

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图2 鲁氏不动杆菌在血平板上的培养结果

1.1.3生化特征

能够产生触酶和氧化酶,触酶、氧化酶阳性,绝对嗜氧菌,需要氧气来进行呼吸作用,色氨酸、葡萄糖、精氨酸、尿素、七叶灵、明胶、半乳糖甙酶试验阴性;同化试验中,葡萄糖、阿拉伯糖、甘露糖、甘露醇、麦芽糖、癸酸、己二酸、苹果酸、柠檬酸、苯乙酸均为阴性、N.乙酰葡萄糖胺、葡萄糖酸盐试验阳性;氧化酶试验阴性。

1.1.4 分子生物学特征

对多种药物耐药的临床菌株 A. lwoffii WJ10621 的基因组包含 3,419,011 个碱基和 3,394 个预测编码序列,G+C 含量为 41.57% [3][6]。基因组包含83个串联重复区、6个5S rRNA基因拷贝、7个23S rRNA基因拷贝和6个16S rRNA基因拷贝,以及91个预测的tRNA基因[3][6]。在该基因组中,62个基因被分配到“对抗生素和有毒化合物的耐药性”子系统,56个基因产物与抗生素耐药基因数据库(ARDB)中的抗生素耐药基因的蛋白质相似性至少为50%[4]。共预测了 26 个编码钴锌镉耐药性的基因和 14 个编码多药耐药外排泵的基因[3]。该菌株包含参与氨基酸代谢(309个基因)和碳水化合物代谢(243个基因)的基因[3]。基因组中分布着84个预测的转座酶基因,这表明存在频繁的水平基因转移事件[3]

1.2分布、传播与致病性

1.2.1 分布与传播

鲁氏不动杆菌常见于人体皮肤、口咽部、会以及世界各地的土壤和植物的正常菌群中[11,12]。鲁氏不动杆菌具有在各种温度、低 pH 值和干燥条件下生存的能力。它常见于冷冻食品和家禽中[13]。甚至在新生儿的皮肤上也发现了鲁氏不动杆菌菌株 [4]。与其他杆状细菌相比,鲁氏不动杆菌在干燥条件下存活特别成功,并且已发现在干燥条件下可存活长达21天[5]。鲁氏不动杆菌还对消毒剂和辐照等灭菌方法具有抗性[13]

1.2.2 致病性

是人类和其他动物的一种病原微生物,对许多抗生素具有传染性和耐药性,包括环丙沙星、头孢他啶、头孢吡肟和哌拉西林[6, 7]。由于其抗生素耐药性和免疫功能低下患者的高感染率,它已成为医院感染中日益严重的问题。在几篇论文中,鲁氏不动杆菌被确定为ICU或新生儿病房医院感染的原因,包括胃炎[8]。鲁氏不动杆菌在干燥条件下的弹性使其能够成为医院的主要病原。该病原体引起的感染在人类临床上表现为伤口感染、脑膜炎、败血症、肺炎和胃肠炎[[9-11]。已确定与鲁氏不动杆菌与胃肠炎有关,因为当食用含有鲁氏不动杆菌的食物并到达胃肠道时,它会粘附并侵入肠道上皮细胞,导致胃肠炎。鲁氏不动杆菌也被确定为许多血流感染的病原体,特别是在涉及导管的病例中[9]

1.3检测方法

(1)血清学检测:血清学检测是鲁氏不动杆菌病流行病学调查中常用而有效的手段。虎红平板凝集试验和试管凝集试验是动物布鲁氏菌病检测的常规方法,其中虎红平板凝集试验因其敏感、快速而为国内外普遍在初筛时采用。但这些方法的准确率依赖于体内抗体水平,血清学阳性只能推断感染。

(2)细菌培养:将采集的标本接种于鲁氏不动杆菌专用培养基中进行增菌培养,然后挑取可疑菌落进行分离培养,得到纯化的菌落。可对纯化菌种进行一系列染色或生化检验从而判断其菌种类型。

(3)分子生物学检测:随着科学技术的发展,已经建立了多种鲁氏不动杆菌病原学诊断方法,包括常规病原分离鉴定技术、分子生物学检测等技术。如PCR技术和基因测序等。这些方法具有较高的特异性和灵敏度,可以快速准确地检测和鉴定鲁氏不动杆菌。

1.4典型案例

某地区发生的一起因饮用水污染导致的群体性腹泻事件。经过对该地区饮用水源的检测,发现水中存在鲁氏不动杆菌,并且该菌对多种抗生素耐药。因此,可以确定该地区饮用水源的污染是导致腹泻事件的原因。

某城市发生的一起因游泳池水污染导致的群体性结膜炎事件。经过对该游泳池水质的检测,发现水中存在鲁氏不动杆菌,并且该菌对多种抗生素耐药。因此,可以确定该游泳池水质的污染是导致结膜炎事件的原因。

1.5防治对策

(1)需要加强水质监测,定期对水源进行微生物检测,特别是对鲁氏不动杆菌的检测。如果发现水源被污染,应立即采取措施进行处置,如停止供水、进行水处理等,以避免感染的发生。

(2)需要建立健全的水处理设施,确保水处理效果。水处理设施应定期进行维护和检修,保证其正常运行,防止水质的恶化。

(3)个人卫生也是预防感染的重要措施。人们应该养成良好的生活习惯,如勤洗手、不饮用生水等,以降低感染的风险。在某些场所,如游泳池、公共澡堂等,应采取必要的卫生措施,如定期更换水、加强水质监测等,以保障公众的健康安全。

(4)对于已经感染的患者,应及时采取有效治疗措施,防止病情恶化。在治疗过程中,应根据药敏试验结果选择合适的抗生素,避免滥用抗生素导致耐药性的产生。

参考文献

[1]Bouvet P J, Jeanjean S, Vieu J F, et al. Species, biotype, and bacteriophage type determinations compared with cell envelope protein profiles for typing Acinetobacter strains[J]. J Clin Microbiol, 1990,28(2):170-176.

[2]Houang E T, Sormunen R T, Lai L, et al. Effect of desiccation on the ultrastructural appearances of Acinetobacter baumannii and Acinetobacter lwoffii[J]. J Clin Pathol, 1998,51(10):786-788.

[3]Hu Y, Zhang W, Liang H, et al. Whole-genome sequence of a multidrug-resistant clinical isolate of Acinetobacter lwoffii[J]. J Bacteriol, 2011,193(19):5549-5550.

[4]Liu B, Pop M. ARDB–Antibiotic Resistance Genes Database[J]. Nucleic Acids Res, 2009,37(Database issue):D443-D447.

[5]Houang E T, Sormunen R T, Lai L, et al. Effect of desiccation on the ultrastructural appearances of Acinetobacter baumannii and Acinetobacter lwoffii[J]. J Clin Pathol, 1998,51(10):786-788.

[6]Hu Y, Zhang W, Liang H, et al. Whole-genome sequence of a multidrug-resistant clinical isolate of Acinetobacter lwoffii[J]. J Bacteriol, 2011,193(19):5549-5550.

[7]Zavros Y, Rieder G, Ferguson A, et al. Gastritis and hypergastrinemia due to Acinetobacter lwoffii in mice[J]. Infect Immun, 2002,70(5):2630-2639.

[8]Kumari M, Batra P, Malhotra R, et al. A 5-year surveillance on antimicrobial resistance of Acinetobacter isolates at a level-I trauma centre of India[J]. J Lab Physicians, 2019,11(1):34-38.

[9]Regalado N G, Martin G, Antony S J. Acinetobacter lwoffii: bacteremia associated with acute gastroenteritis[J]. Travel Med Infect Dis, 2009,7(5):316-317.

[10]Cao S, Geng Y, Yu Z, et al. Acinetobacter lwoffii, an emerging pathogen for fish in Schizothorax genus in China[J]. Transbound Emerg Dis, 2018,65(6):1816-1822.

[11] Prashanth K, Badrinath S. Epidemiological investigation of nosocomial Acinetobacter infections using arbitrarily primed PCR & pulse field gel electrophoresis[J]. Indian J Med Res, 2005,122(5):408-418.