鼠伤寒沙门氏菌(Salmonella Typhimurium)
物种名:鼠伤寒沙门氏菌
拉丁学名:Salmonella Typhimurium
分类学地位:细菌界Bacteria;假单胞菌门Pseudomonadota;
γ-变形菌纲Gammaproteobacteria;肠杆菌目Enterobacteriales;
肠杆菌科Enterobacteriaceae;沙门氏菌属Salmonella
鼠伤寒沙门氏菌(Salmonella typhimurium)是一种重要的食物中毒病原菌,属于沙门氏菌属B群,具有广泛的宿主范围,是引起急性胃肠炎的主要病原菌之一。
1.1生物学特性
1.1.1培养特征
鼠伤寒沙门氏菌是一种兼性厌氧菌,在适宜的培养条件下,如37℃、pH 7.0-7.5的环境中,能够在多种培养基上生长[1]。在琼脂平板上,该菌形成的菌落通常较小,圆形,边缘整齐,表面光滑且湿润[2]。鼠伤寒沙门氏菌在不同培养基上的形态特征见图1。

图1 鼠伤寒沙门氏菌在不同培养基上的培养特性[3]
A:普通培养基;B:麦康凯琼脂培养基;C:血琼脂培养基;D:BS培养基
1.1.2形态学特征
鼠伤寒沙门氏菌是一种革兰氏阴性杆菌,无芽孢、无荚膜,但有鞭毛,能运动。在显微镜下观察,菌体呈杆状,直或稍弯。鼠伤寒沙门氏菌在显微镜下呈现为细长的杆菌,大小通常为0.7-1.5 μm×2.0-5.0 μm,菌端钝圆,革兰氏阴性(图2)[4]。细胞排列呈单个、成对或成堆排列,散在分布。

图2 鼠伤寒沙门氏菌革兰染色镜检结果(1000×)[3]
1.1.3生化特征
鼠伤寒沙门氏菌能够发酵葡萄糖和其他糖类,产生酸但不产生气体。此外,该菌还具有多种酶类,参与代谢过程[4]。
1.2分布、传播与致病性
1.2.1分布与传播
鼠伤寒沙门氏菌是一种广泛分布于自然界中的细菌,具有很强的对外界环境的抵抗力。这种细菌不仅存在于许多家禽(如鸡、鸭、鸽等)和家畜(如猪、牛、羊、马、狗、猫等)的肠道中,还存在于鼠类和飞鸟的肠道中[1, 5]。因此,这些动物及其产品是鼠伤寒沙门氏菌的主要储存库和传染源。另外,人及带菌者也是重要的传染源。
鼠伤寒沙门氏菌的传播途径多种多样。其中,最主要的传播方式是通过污染的食物或水经口摄入。这通常发生在食物制备或储存过程中,当食物被污染后,再经过不适当的烹饪或处理,细菌未被完全杀死,就会导致感染。此外,直接接触带菌动物或接触被污染的环境也可能导致感染。例如,在医院环境中,鼠伤寒沙门氏菌可以通过医护人员的手、医疗用具、尿布及尿垫等间接传播。在更为罕见的情况下,病原体污染的空气也可能通过呼吸道传播[6, 7]。
1.2.2致病性
鼠伤寒沙门氏菌是一种重要的肠道致病菌,具有高度的适应性和广泛的宿主范围,能够引起多种动物和人类的感染[8]。以下是关于其致病性的详细介绍:
(1)感染过程
鼠伤寒沙门氏菌经胃进入肠道,并在肠道内增殖。它能够粘附于肠黏膜上皮细胞,进而侵入固有层。在侵入过程中,该菌会释放各种毒素,导致肠道发生急性炎症反应。这些毒素可以破坏肠黏膜的完整性,引发充血、水肿和点状出血等病理变化。随着病情的发展,可能形成浅表性溃疡,并有炎性细胞浸润[9]。
(2)临床表现
鼠伤寒沙门氏菌感染的潜伏期多数为12-72小时,但也可能短至2小时或长达4周。免疫功能正常的人通常表现为胃肠炎型症状,如发热、腹痛、腹泻和恶心等。而免疫功能不全的患者,如婴幼儿、老年人或患有其他疾病的人,可能出现更为严重的败血症型和混合型症状。这些严重的症状可能包括高热、皮疹或出血点、肝脾肿大,以及全身严重的中毒症状。此外,鼠伤寒沙门氏菌感染还可能引发各种组织器官的损害,如消化系统、运动系统、循环系统和呼吸系统等[1]。
(3)毒力因子
鼠伤寒沙门氏菌具有多种毒力因子,这些因子在细菌的致病过程中起着关键作用[4]。例如,侵袭蛋白能够帮助细菌粘附并侵入肠黏膜上皮细胞,而毒素则可以引发肠道的急性炎症反应。这些毒力因子的存在使得鼠伤寒沙门氏菌成为一种高度致病的细菌[10]。

M,DL2000 DNA manker;1-12,分别为鼠伤寒沙门氏菌的毒力基因invA、spvR、spvA、spvB、spvC、spuD sseE、sseL、mogA、mgtC、bcfA和araB;13-28,分别为毒力基因invJ、sscA、sseC、sseD、virK、sipA、sopA、ssaB、misL、ofr319、pipC、SPI-1、SPI-2、SPI-3、SPI-4和SPI-5。
(4)高发病率和重要性
鼠伤寒沙门氏菌是引起食物中毒的主要病原菌之一,也是微生物遗传学发展的一种非常重要的细菌。它在世界各国分离率都很高,是沙门氏菌感染中发病率居首位的菌种,约占人源沙门氏菌感染的40%-80%。因此,对鼠伤寒沙门氏菌的致病性和感染机制的研究具有重要的公共卫生意义[4]。
1.3检测方法
(1)常规培养法:这是检测鼠伤寒沙门氏菌的经典方法。通过采集疑似感染者的粪便、血液、尿液或其他体液样本,接种到选择性培养基(如SS琼脂、麦康凯琼脂等)上进行培养[11]。这些培养基含有抑制其他细菌生长的成分,有利于鼠伤寒沙门氏菌的选择性生长。培养后,观察菌落的形态、颜色和大小等特征,进一步进行生化试验(如糖发酵试验、三糖铁试验等)和血清学鉴定,以确认是否为鼠伤寒沙门氏菌。
(2)免疫学方法:免疫学方法包括酶联免疫吸附试验(ELISA)、免疫荧光试验(IFT)等。这些方法利用鼠伤寒沙门氏菌的特异性抗原与抗体之间的反应进行检测。例如,ELISA方法可以将鼠伤寒沙门氏菌的特异性抗原包被在固相载体上,加入待检样本后,若样本中存在鼠伤寒沙门氏菌的抗体,则会与抗原结合形成复合物,通过酶标记的二抗和底物显色反应来检测复合物的存在。这些方法具有灵敏度高、特异性强、操作简便等优点。
(3)分子生物学方法:鼠伤寒沙门氏菌的分子检测主要采用实时荧光定量PCR。其基本步骤通常包括:先从粪便、食品、水样或培养菌落中提取DNA,再加入特异性引物、探针和PCR反应体系进行扩增,最后依据Ct值和荧光信号判定结果。该方法具有灵敏度高、特异性强和检测速度快等优点,可用于鼠伤寒沙门氏菌的快速筛查和定量检测[12, 13]。
目前,鼠伤寒沙门氏菌的实时PCR检测多采用多重体系,即在检测Salmonella spp.通用靶基因的同时,再结合fliC、fljB等血清型相关基因进行特异鉴定[1, 2]。此外,针对鼠伤寒沙门氏菌DT104株的实时PCR已公开完整引物和探针序列,其上游引物为5’-GGACCTGGCTGAGTTTATTTCG-3’,下游引物为5’-GCATCGGCTGTGAGACCAA-3’,探针为5’-FAM-TGGTTTCTGAAAGCGGAGCTAATGCG-BHQ-3’[14]。常用反应条件为95℃ 10 min,随后40个循环(95℃ 10 s,64℃ 1 min)[12]。因此,实时荧光定量PCR已成为鼠伤寒沙门氏菌检测的重要分子生物学方法。
1.4典型案例
鼠伤寒沙门氏菌可在儿童聚集环境中引起暴发。西班牙马德里曾报道一起学前儿童场所相关鼠伤寒沙门氏菌感染事件,患儿主要表现为胃肠炎症状,如腹泻、呕吐和腹痛,流行病学调查和实验室检测证实病原为鼠伤寒沙门氏菌[15]。该事件提示,在儿童聚集环境中,污染食物、受污染环境或不良卫生条件均可成为传播的重要因素。
在免疫功能低下人群中,鼠伤寒沙门氏菌感染可进展为重症。相关病例报道显示,婴幼儿等高危宿主感染后可迅速发展为败血症,病情明显重于普通胃肠炎病例[16]。此外,鼠伤寒沙门氏菌还可通过与患病动物接触传播给人,已有文献报道农场动物及兽医诊所相关的人兽共患传播事件,提示接触动物后加强手卫生和环境消毒具有重要意义[17]。
1.5防治对策
(1)加强食品卫生管理:严格监控食品生产、加工、储存和运输过程中的卫生质量,确保食品不受污染。
(2)改善环境卫生:加强城市环境卫生管理,定期清理垃圾、污水等污染源。
(3)养成良好的个人卫生习惯:勤洗手,特别是在接触食物、动物和公共设施后。
(4)加强免疫接种:对于易感人群,如婴幼儿、老年人、免疫功能低下者等,可考虑接种鼠伤寒沙门氏菌疫苗,以提高免疫力。
参考文献
[1] Jajere SM. A review of Salmonella enterica with particular focus on the pathogenicity and virulence factors, host specificity and antimicrobial resistance including multidrug resistance. Veterinary World, 2019, 12: 504-521.
[2] Ryan KJ, Ray CG. Sherris medical microbiology. 7th ed. New York: McGraw-Hill Education, 2018.
[3] 郭伟娜, 陶晶, 何梦婷 等. 鸡源鼠伤寒沙门菌的分离鉴定、药敏试验与毒力基因检测. 浙江农业学报, 2024, 36: 1-12.
[4] Pegues DA, Miller SI. Salmonella species, including Salmonella Typhi. Bennett JE, Dolin R, Blaser MJ. Mandell, Douglas, and Bennett’s principles and practice of infectious diseases. 9th ed. Philadelphia: Elsevier, 2020.
[5] Shaji S, Selvaraj RK, Shanmugasundaram R. Salmonella infection in poultry: a review on the pathogen and control strategies. Microorganisms, 2023, 11: 2814.
[6] Pérez KM, Hernandez SM, Sieverts O et al. Salmonella environmental persistence informs management relevant to avian and public health. American Journal of Veterinary Research, 2025, 86: 1-13.
[7] Camps-Castellà M, Abella-Ametller C, Planell R et al. A two-year study of Salmonella in four natural watersheds highlights the need for increased environmental Salmonella surveillance to close the One Health loop. Environmental Microbiology, 2025, 27: e16789.
[8] 张伟, 史超, 于海涛 等. 鼠伤寒沙门氏菌细菌铁蛋白(Bfr)的生物信息学分析及原核表达载体构建. 黑龙江畜牧兽医, 2024: 81-89.
[9] Fàbrega A, Vila J. Salmonella enterica serovar Typhimurium skills to succeed in the host: virulence and regulation. Clinical Microbiology Reviews, 2013, 26: 308-341.
[10] Dos Santos AMP, Ferrari RG, Conte-Junior CA. Virulence factors in Salmonella Typhimurium: the sagacity of a bacterium. Current Microbiology, 2019, 76: 762-773.
[11] 金彦, 王敬依, 程佳宁 等. 基于微流控芯片的鼠伤寒沙门氏菌免疫磁分离技术. 食品科学, 2025, 46: 1-11.
[12] Hwa LS, Yeal JB, Nabin R et al. A multiplex real-time PCR for differential detection and quantification of Salmonella spp., Salmonella enterica serovar Typhimurium and Enteritidis in meats. Journal of Veterinary Science, 2009, 10: 43-51.
[13] Munoz N, Diaz-Osorio M, Varela GJ et al. Development and evaluation of a multiplex real-time polymerase chain reaction procedure to clinically type prevalent Salmonella enterica serovars. The Journal of Molecular Diagnostics, 2010, 12: 220-225.
[14] Bugarel M, Granier SA, Weill FX et al. A multiplex real-time PCR assay targeting virulence and resistance genes in Salmonella enterica serotype Typhimurium. BMC Microbiology, 2011, 11: 151.
[15] Olmedo Lucerón C, Pérez Meixeira A, Abad Sanz I et al. Notes from the field: an outbreak of Salmonella Typhimurium associated with playground sand in a preschool setting-Madrid, Spain, September-October 2016. Morbidity and Mortality Weekly Report, 2017, 66: 256-257.
[16] Dabre LR, Sheikh S, Barot VS et al. Salmonella Typhimurium sepsis in a neonate: a rare and challenging case. International Journal of Contemporary Pediatrics, 2025, 12: 7006.
[17] Cherry B, Burns A, Johnson GS et al. Salmonella Typhimurium outbreak associated with veterinary clinic. Emerging Infectious Diseases, 2004, 10: 2249-2251.
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