文氏巴尔通体（Bartonella vinsonii）
物种名：文氏巴尔通体
拉丁学名：Bartonella vinsonii
分类学地位：细菌界Bacteria；假单胞菌门Pseudomonadota；
α-变形菌纲Alphaproteobacteria；根瘤菌目Rhizobiales；
巴尔通体科Bartonellaceae；巴尔通体属Bartonella
文氏巴尔通体（Bartonella vinsonii），属于巴尔通体属，巴尔通体是一类新近关注、具有复杂生物学特性的古老病原体。巴尔通体可经节肢动物媒介（如蚤、蜱）传播，为长链动物门/胞内寄生的革兰阴性细菌；迄今已发现21种及3亚种，其中8种与人类感染密切相关不同巴尔通体种感染可引起猫抓病、心内膜炎、杆菌性血管瘤病等不同疾病[1]
1.1生物学特性
1.1.1培养特征
该菌体外培养需要特定的培养基和培养条件：分离培养时，将经活血培养的抗凝血标本接种于含5%去纤维兔血的脑心浸液培养基上，置于37℃含5% CO₂的培养箱中孵育。在适宜培养条件下，可挑取脂肪样透明可疑菌落进行革兰染色镜检，镜下可见革兰染色阴性、微弯曲的细小杆菌[2]。
图1 巴尔通体在胰蛋白胨大豆琼脂（TSA）上培养的结果[3]
1.1.2形态学特征
文氏巴尔通体是一种微小的杆菌，菌体大小约为（0.3-0.5）μm × （1.0-1.7）μm。该菌为革兰染色阴性、无运动性的微弯曲杆菌，形态上与五日热巴尔通体（B. quintana）相似。在光镜下可观察到其典型的杆菌形态，菌体两端钝圆，有时可见菌体的弯曲或螺旋状排列[4]。
图2 文氏巴尔通体伯氏亚种III型电镜图[5]
1.1.3生化特征
文氏巴尔通体的生化特性相对独特。该菌可以利用多种碳源进行生长，如葡萄糖、果糖和蔗糖等。然而，它不能利用乳糖或甘露醇。此外，文氏巴尔通体对多种抗生素敏感，包括氨基糖苷类、四环素类和大环内酯类等。
1.1.4分子生物学特征
文氏巴尔通体具有多种与宿主细胞相互作用和致病性相关的基因。这些基因编码的蛋白质包括表面蛋白、粘附素、毒力因子和胞内生存相关的酶类等。包括衍生膜蛋白（Dmp）、BapA和BapB蛋白、毒素B（Toxin B）、脂多糖（LPS）。
1.2分布、传播与致病性
1.2.1分布与传播
文氏巴尔通体常通过跳蚤、体虱等吸血节肢动物传播。该菌具有不完全的宿主特异性：文氏巴尔通体博格霍夫亚种（B. vinsonii subsp. berkhoffii）的宿主为郊狼、狐狸和狗，其中郊狼和狐狸是野生宿主，狗是与人类更为亲密的宿主动物；文氏巴尔通体阿鲁潘亚种（B. vinsonii subsp. arupensis）的宿主为啮齿动物。其主要引起人类和动物的感染性心内膜炎。我国已把巴尔通体病列为14种新发传染病之一[6]。
1.2.2致病性
文氏巴尔通体的致病性主要体现在其与人类和多种动物感染的关系上。文氏巴尔通体博格霍夫亚种可导致犬和人的感染性心内膜炎，文氏巴尔通体阿鲁潘亚种则可在免疫低下人群中引起菌血症及心内膜炎等感染。该菌的致病机制与巴尔通体家族共同的特性相关，即通过粘附并侵袭宿主的血管内皮细胞和红细胞，在细胞内生存并逃避宿主免疫清除。巴尔通体感染可表现为菌血症、心内膜炎、淋巴结肿大等非特异性症状[7]。
1.3检测方法
（1）试剂盒法：可采用巴尔通体实时荧光定量PCR（SYBR-Green）检测试剂盒进行检测。该方法针对巴尔通体种属特异基因——枸橼酸合酶（gltA）基因进行扩增，通过熔解曲线Tm值分析判定结果，较常规培养法更快捷、简便、敏感，适合巴尔通体感染的实验室快速诊断和流行病学调查[8]。
（2）分子生物学法：可采用基于特异性靶基因的实时荧光定量PCR法进行特异性检测。栗冬梅[9]等根据文森巴尔通体博格霍夫亚种的基因序列设计特异性引物与探针，配置PCR反应体系后在实时荧光PCR仪上进行扩增。反应程序为：50℃孵育2分钟；95℃预变性30秒；随后进行40个循环，每个循环包括95℃变性5秒，55℃退火延伸30秒。该方法具有高度的种特异性，与其他巴尔通体、布鲁氏菌等常见病原体无交叉反应，检测灵敏度可达每个反应10拷贝，扩增效率良好，诊断灵敏度和特异性均达到100%。该方法所用靶标及引物（探针）序列见表1。
表1 文森巴尔通体博格霍夫亚种qPCR引物序列[9]
| 引物名称 | 序列 |
| F | 5′-CACACAACCCCATATCTCATTCG-3′ |
| R | 5′-CATGCTGTATCGGCTATGGTTTT-3′ |
1.4典型案例
自然感染巴尔通体的猫、啮齿类等动物可长期维持菌血症,无明显临床症状。如果犬感染巴尔通体则可能罹患心内膜炎、心律失常、心肌炎、肉芽肿性淋巴结炎等与人类相似的疾病。1996年法国一项血清流行病学研究显示，16%的住院无家可归患者感染了巴尔通体，而未住院的无家可归者感染率为1.8%，普通献血者感染率为0%[10]。
1.5防治对策
（1）教育公众养成良好的个人卫生习惯，如勤洗手、避免与宠物过于亲密接触等，减少感染风险。
（2）指导宠物主人妥善处理宠物排泄物，避免病原体通过水源传播。
参考文献
[1] 杨发莲, 白鹤鸣, 杨慧 等. 巴尔通体分离培养及生物学特性研究. 中国热带医学杂志, 2007, 7: 2001-2004.
[2] 栗冬梅, 孟凤霞, 宋秀平 等. 从山东省家犬血液中分离出致病性巴尔通体——文森巴尔通体伯格霍夫亚种. 中华流行病学杂志, 2006, 27: 333-338.
[3] Rao HX, Yu J, Guo P et al. Bartonella Species Detected in the Plateau Pikas (Ochotona curzoiae) from Qinghai Plateau in China. Biomedical and Environmental Sciences: BES. 2015, 28: 674-678.
[4] D L Kordick, B Swaminathan, C E Greene et al.Bartonella vinsonii subsp. berkhoffii subsp. nov., isolated from dogs; Bartonella vinsonii subsp. vinsonii; and emended description of Bartonella vinsonii. International Journal of Systematic Bacteriology, 1996, 46: 704-9.
[5] Muller A, Soto F, Sepulveda M et al. Bartonella vinsonii subsp. berkhoffii and B. henselae in dogs. Epidemiol Infect, 2018, 146: 1202-1204.
[6] 张丽娟, 贺金荣, 海荣 等. 巴尔通体感染性心内膜炎的研究进展. 中华流行病学杂志, 2005, 26: 91-92.
[7] 刘云彦, 栗冬梅, 刘起勇 等. 巴尔通体感染性心内膜炎的研究进展. 微生物学通报, 2015, 42: 192-199.
[8] 姚美琳, 罗炜, 李国伟 等. 巴尔通体实时荧光定量PCR检测方法的建立. 中国热带医学杂志, 2009, 9: 1963-1965.
[9] 栗冬梅, 宋秀平, 王君 等. TaqMan-MGB探针检测文森巴尔通体博格霍夫亚种实时荧光定量PCR方法的建立及应用. 微生物学报, 2013, 53: 976-983.
[10] Brouqui P, Houpikian P, Dupont HT et al. Survey of the seroprevalence of Bartonella quintana in homeless people. Clinical Infectious Diseases, 1996, 23: 756-759.