别氏不动杆菌(Acinetobacter bereziniae)
物种名:别氏不动杆菌
拉丁学名:Acinetobacter bereziniae
分类学地位:细菌界Bacteria;假单胞菌门Pseudomonadota;
γ-变形菌纲Gammaproteobacteria;莫拉氏菌目Moraxellales;
莫拉氏菌科Moraxellaceae;不动杆菌属Acinetobacter
别氏不动杆菌是革兰氏阴性、严格需氧、无芽孢、无运动性的球杆状细菌。该菌最早在临床和环境样本中被分离,常见于水体、土壤及医院环境中。虽然相比于临床常见的鲍曼不动杆菌(A. baumannii)其致病性较低,但也可作为机会致病菌引起人类感染,如血感染或泌尿道感染。此外,A. bereziniae与其他不动杆菌一样,具有较强的环境存活能力,并在一定程度上携带抗生素耐药基因,因此在医院获得性感染和耐药性研究中受到关注。
1.1生物学特性
1.1.1培养特征
别氏不动杆菌可在LB琼脂培养基上、30℃条件下培养。其在琼脂表面的生长并非单层菌落,而是经IV型菌毛介导的细胞聚集,在固体表面形成具有层次结构的生物膜样多细胞群体,表现出群体发育与表面定殖特性[1]。

图1 别氏不动杆菌在CRE Brilliance琼脂平板上的菌落形态[2]
1.1.2形态学特征
别氏不动杆菌是一种革兰氏阴性杆菌。在显微镜下,它们呈现为短小的、杆状的结构,通常不形成芽孢,并且是非运动性的,即它们没有鞭毛来帮助它们移动。扫描电镜下,别氏不动杆菌呈短小球杆状或短杆状,菌体长度约为微米级,其在不同处理浓度下,其细胞表面可出现皱缩、凹陷和细胞壁损伤等形态改变[4]。

图2 别氏不动杆菌的电子扫描显微照片[4]
1.1.3生化特征
别氏不动杆菌的生化特性可能因菌株的不同而有所差异,但通常它们能够氧化发酵某些糖类,如葡萄糖。它们也可能产生特定的酶,这些酶可以通过生化测试进行检测,如氧化酶测试、过氧化氢酶测试等[2-4]。
1.2分布、传播与致病性
1.2.1分布与传播
别氏不动杆菌是一种机会性病原体,被用作研究医院感染(院内感染)有效用药靶点的模式菌株[5]。此外,医护人员的手也可能是传播这些细菌的重要途径[4]。
1.2.2致病性
别氏不动杆菌是一种机会性致病菌,主要感染免疫力低下的患者,如老年人、慢性病患者和接受重症监护的患者[6]。它们可以引起多种类型的感染,包括肺炎、尿路感染、血感染等。这些感染通常与高死亡率相关,部分原因是因为这些细菌对多种抗生素具有抗性。
1.3检测方法
针对别氏不动杆菌的分子检测,可采用基于rpoB基因的种特异性PCR方法。Li等建立了用于检测9种不动杆菌的种特异性PCR[7, 8]。其中A. bereziniae的特异性引物为Aber-F(5′-ACGGTTCTCCGGGCGTCT-3’)和Aber-R(5′-AACACCACCTTCAGCGATTTTA-3’),扩增产物长度为53 bp,最佳退火温度为64℃,检测下限为200 pg基因组DNA,对A. bereziniae的灵敏度和特异性均为100%。其基本流程为:首先从培养获得的疑似Acinetobacter菌株中提取基因组DNA,文中采用G-spin Genomic DNA Extraction kit;随后使用AccuPower PCR PreMix配制PCR反应体系,预混液中包含dNTP、KCl、Tris-HCl、MgCl2和Taq DNA polymerase,再加入模板DNA及上下游引物各20 pmol,将终体积补足至20 μL;PCR扩增条件为95℃预变性5 min,随后进行30个循环,每个循环包括95℃ 20 s、64℃ 30 s和72℃ 30 s,最后于72℃延伸7 min;扩增结束后,取2 μL产物在2%琼脂糖凝胶上以100V电泳30 min,经溴化乙锭染色并在紫外灯下观察结果,若出现539 bp特异性条带,则可判定样本为A. bereziniae阳性。
1.4典型案例
别氏不动杆菌虽较少见,但已被证实可引起真实的人体感染,尤其多见于住院患者、基础疾病患者或接受侵入性操作者。已有研究报道,该菌可导致菌血症、呼吸道感染、尿路感染及眼部分泌物相关感染等,其中部分菌株还表现出多重耐药性,增加了临床治疗难度。Kuo等报道了由其引起的菌血症病例,而该菌群后来已被归入Acinetobacter bereziniae;Mo等进一步总结并报道了医院来源的A. bereziniae感染病例,提示其不仅能够引起临床感染,而且可能作为机会致病菌在医院环境中持续存在并传播[5, 9]。
1.5防治对策
(1)建立并管理水源保护区,确保这些区域内没有可能导致污染的活动,如农业活动、工业排放或未经处理的废水排放。
(2)对水源进行定期监测,以检测和确认是否存在不动杆菌或其他污染物的污染。
(3)定期对医院环境,特别是高频接触的表面(如门把手、床栏、桌面等)进行清洁和消毒。对于可能被污染的设备或物品,如呼吸机、导管等,应严格进行清洗和消毒。
(4)加强抗菌药物的合理使用和管理,避免滥用和过度使用。
(5)对于已经感染或携带别氏不动杆菌的患者,应采取接触隔离措施,如使用隔离衣、手套等防护用品,以减少病原菌的传播。
参考文献
[1] Willumsen, Sigrid Serine. Acquisition of foreign DNA by natural transformation in Acinetobacter baylyi: quantitative estimates and molecular characterization of the introgression process. Universitetet i Tromsø, 2008.
[2] Merlino J, Rizzo S, Beresford R et al. Isolation of Acinetobacter bereziniae harbouring plasmid blaNDM-1 in central Sydney, Australia. Pathology, 2023, 55: 867-868.
[3] Reyes SM, Bolettieri E, Allen D et al. Genome sequences of four strains of Acinetobacter bereziniae isolated from human milk pumped with a personal breast pump and hand-washed milk collection supplies. Microbiology Resource Announcements, 2020, 9: e00770-20.
[4] Yang R, Wang S, Yousaf G et al. Bioremediation of fluridone by Acinetobacter bereziniae FJ-5: metabolic pathway, metabolomics mechanism and biotoxicity evaluation. Journal of Hazardous Materials, 2026, 503: 141160.
[5] Shailza Singh, Priyanka Joshi and Balu Ananda Chopade. Choke point analysis of the metabolic pathways of Acinetobacter baylyi: A genomics approach to assess potential drug targets. Journal of Bioinformatics and Sequence Analysis, 2009, Vol.1: 41-45.
[6] Tavares LCB, Cunha MPV, De Vasconcellos FM et al. Genomic and clinical characterization of IMP-1-producing multidrug-resistant Acinetobacter bereziniae isolates from bloodstream infections in a Brazilian tertiary hospital. Microbial Drug Resistance, 2020, 26: 1399-1404.
[7] Guo H, Li L, Chen Y et al. Genomic insights into a multidrug-resistant Acinetobacter bereziniae strain co-carrying blaOXA-301 and blaNDM-1 from China. Journal of Global Antimicrobial Resistance, 2023, 35: 56-59.
[8] Li XM, Choi JA, Choi IS et al. Development and evaluation of species-specific PCR for detection of nine Acinetobacter species. Annals of Clinical and Laboratory Science, 2016, 46: 270-278.
[9] Kuo SC, Fung CP, Lee YT et al. Bacteremia due to Acinetobacter genomic species 10. Journal of Clinical Microbiology, 2010, 48: 586-590.
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