木糖氧化无色杆菌(Achromobacter xylosoxidans)

物种名:木糖氧化无色杆菌/木糖氧化产碱杆菌

拉丁学名:Achromobacter xylosoxidans

分类学地位:细菌界 Bacteria;变形菌门 Proteobacteria;

β-变形菌纲 Betaproteobacteria;伯克霍尔德菌目 Burkholderiales;

产碱杆菌科 Alcaligenaceae;无色杆菌属 Achromobacter

木糖氧化无色杆菌Achromobacter xylosoxidans是无色杆菌属(Achromobacter)的模式种,是一种革兰氏阴性、需氧、非发酵型杆菌。该菌最早由Yabuuchi和Ohyama于1971年从人耳分泌物中分离并描述,随后被归入无色杆菌属,成为该属的代表种[1, 2]

A. xylosoxidans广泛存在于水体、土壤以及潮湿环境中,具有较强的环境适应能力。该菌通常不属于人体优势正常菌群,但在免疫功能低下、长期住院以及患有慢性肺部疾病的人群中,可作为机会致病菌引起感染,可导致呼吸道感染、血流感染、尿路感染等疾病。其中,囊性纤维化患者慢性肺部感染是目前研究较多的感染类型之一[3]

1.1 生物学特性

1.1.1 培养特征

Achromobacter xylosoxidans属于需氧性非发酵革兰氏阴性杆菌,可在血琼脂培养基、巧克力琼脂培养基以及麦康凯培养基等常用培养基中生长。在血琼脂培养基上,该菌通常形成圆形、光滑、湿润的灰白色或半透明菌落,部分菌株可表现出黏液样菌落特征。在麦康凯培养基上,由于该菌不能发酵乳糖,因此通常形成无色或浅色菌落[3]。由于A. xylosoxidans与铜绿假单胞菌(Pseudomonas aeruginosa)等其他非发酵革兰氏阴性杆菌在培养特征上存在一定相似性,因此仅依靠菌落形态难以完成准确鉴定,通常需要结合生化实验、MALDI-TOF MS以及分子检测方法进行进一步鉴定[4]

图1 Achromobacter xylosoxidans培养特征[5]

A:LB 培养基菌落形态;B:LB 培养基单菌落形态;

1.1.2 形态学特征

Achromobacter xylosoxidans为革兰氏阴性杆菌,染色后呈红色,菌体通常呈短杆状或杆状,多单独存在,也可成对排列,不形成芽孢。该菌具有革兰氏阴性细菌典型结构,包括外膜、肽聚糖层以及细胞质膜,其外膜中的脂多糖(Lipopolysaccharide,LPS)与细菌感染过程中的炎症反应有关。该菌具有运动能力,早期研究发现其具有鞭毛结构,可通过鞭毛进行运动。除此之外,A. xylosoxidans具有较强的生物膜形成能力,能够增强环境适应能力,并促进其在宿主体内长期定殖,是其形成慢性感染的重要因素之一[3, 6]

图2 Achromobacter xylosoxidans显微形态

A:扫描电镜照片[7];B:革兰氏染色照片[5]

1.1.3 生化特征

Achromobacter xylosoxidans属于非发酵型革兰氏阴性杆菌,其主要生化特征为氧化酶阳性、过氧化氢酶阳性、不能发酵葡萄糖、硝酸盐还原试验阳性,并具有氧化木糖的能力。“xylosoxidans”这一名称来源于该菌能够氧化木糖(xylose)的生化特征[1]。该菌通常不产生吲哚和硫化氢,乳糖发酵试验阴性,在麦康凯培养基上形成无色菌落。由于其部分生化特征与其他非发酵革兰氏阴性杆菌相似,因此实验室鉴定通常需要结合分子检测方法进行确认[8]

1.1.4 分子生物学特征

Achromobacter xylosoxidans具有较大的细菌基因组,其遗传信息主要储存在一条环状染色体中。全基因组测序研究显示,该菌基因组大小约为7 Mb,包含大量编码蛋白基因以及与代谢、环境适应相关的遗传信息,这些遗传特征可能与其较强的环境适应能力有关[9]。目前,对A. xylosoxidans的分子鉴定主要依靠16S rRNA基因测序以及多位点序列分析(MLSA)等方法,其中多个保守管家基因序列的联合分析可提高Achromobacter属内不同菌种之间鉴别的准确性。

1.2 分布、传播与致病性

1.2.1 分布与传播

Achromobacter xylosoxidans广泛存在于自然环境中,包括水体、土壤、污水以及潮湿环境中。由于该菌具有较强的环境适应能力,可长期存在于医院供水系统、湿润表面以及医疗设备中,因此被认为是一种具有环境来源的机会致病菌[3]。该菌在人群中的传播主要与环境暴露以及医疗相关因素有关。医院环境中的水源、呼吸治疗设备以及污染的医疗器械均可能成为潜在传播途径。对于长期住院、接受机械通气、使用导管或免疫功能低下的患者,感染风险明显增加[10]

此外,A. xylosoxidans也是囊性纤维化(Cystic Fibrosis,CF)患者呼吸道中较常分离出的非发酵革兰氏阴性菌之一,可在患者肺部长期定殖并引起慢性感染[11]

1.2.2 致病性

Achromobacter xylosoxidans是一种机会致病菌,通常不会导致健康人群发生严重感染,但当宿主免疫功能降低或存在慢性疾病时,可侵入人体并引起感染。该菌感染主要发生于长期住院患者、免疫功能受损患者以及患有慢性肺部疾病的人群,可导致呼吸系统感染、血流感染、尿路感染、伤口感染等多种疾病[3]。在临床感染中,A. xylosoxidans最常见于呼吸道感染,尤其是在囊性纤维化(CF)患者中。该菌能够在患者呼吸道内长期定殖,并可逐渐发展为慢性感染。与其他非发酵革兰氏阴性杆菌类似,A. xylosoxidans感染具有治疗困难、易复发等特点[11]

A. xylosoxidans具有多种与致病相关的生物学特征。首先,该菌具有较强的环境适应能力,能够在水环境和医疗环境中长期存活,使其具有传播和感染机会。其次,该菌具有运动能力,可通过鞭毛帮助其在环境以及宿主体内移动。此外,生物膜形成能力是该菌的重要致病因素之一,生物膜能够促进细菌附着于宿主组织表面,并提高细菌对抗菌药物和免疫清除作用的抵抗能力,从而促进慢性感染形成[3, 6]

除生物膜形成外,A. xylosoxidans还具有较强的天然耐药性。部分菌株能够产生β-内酰胺酶,并通过外排泵系统降低抗菌药物浓度,使其对多种抗菌药物表现出不同程度的耐受性,增加了临床治疗难度[12]。根据感染部位和临床表现不同,Achromobacter xylosoxidans引起的主要疾病类型如下:

表1 Achromobacter xylosoxidans感染类型及相关疾病[3, 11]

感染类型 相关疾病
呼吸系统感染 囊性纤维化相关慢性肺部感染、肺炎、支气管感染
血液感染 菌血症、败血症
泌尿系统感染 尿路感染
医疗相关感染 导管相关感染、医院获得性感染
其他感染 伤口感染、中枢神经系统感染

1.3 检测方法

(1)传统方法:目前检测Achromobacter xylosoxidans主要依靠菌株分离培养、形态观察、生化实验以及自动化鉴定系统。首先通过血琼脂培养基、麦康凯培养基等进行细菌培养,根据菌落形态、革兰氏染色结果以及氧化酶、过氧化氢酶、硝酸盐还原等生化特征进行初步鉴定。由于该菌与其他非发酵革兰氏阴性杆菌具有相似的培养和生化特征,因此传统方法可能存在鉴定困难,需要结合分子检测技术进一步确认[3]

(2)新型检测法:目前,对A. xylosoxidans的分子鉴定可采用16S rRNA基因测序、多位点序列分析(MLSA)以及多位点序列分型(MLST)等方法,其中多个保守管家基因序列的联合分析有助于提高Achromobacter属内菌种鉴别和分类研究的准确性[8]

随着分子生物学技术的发展,16S rRNA基因测序、多位点序列分析(MLSA)、MALDI-TOF MS以及全基因组测序等方法逐渐应用于A. xylosoxidans的检测。其中,16S rRNA基因测序可用于菌种初步鉴定,MLSA通过分析多个保守基因序列提高近缘菌种鉴别能力,MALDI-TOF MS具有快速、高效的特点,可用于临床样本中细菌的快速鉴定[8, 13]

表2 Achromobacter xylosoxidans常用检测方法

检测方法 特点
培养及生化鉴定 操作简单,可根据菌落形态和生化反应进行初步鉴定
自动化鉴定系统 检测速度快,适用于临床实验室菌种鉴定
16S rRNA基因测序 可用于细菌分类和菌种初步鉴定
多位点序列分析(MLSA) 提高Achromobacter属内菌种鉴别准确性

1.4 典型案例

1988年,美国研究人员报道了一例由水环境传播的Achromobacter xylosoxidans感染病例。一名患有转移性乳腺癌的患者出现菌血症,经调查发现,其家庭饮用水井中的水被确定为感染来源。该病例是首次报道由明确水源导致的社区获得性A. xylosoxidans感染案例,证明了环境水体可以作为该菌的重要储存场所,并具有导致人类感染的可能[14]

1983年,法国研究人员报道了一起医院内A. xylosoxidans感染事件。在某医院重症监护环境中,该菌通过血液透析系统中的去离子水传播,持续18个月导致37名患者发生定植,部分患者出现严重感染,其中2例死亡。调查发现,受污染的医疗用水是此次感染暴发的重要来源,该事件提示医院水系统可能成为A. xylosoxidans长期存在和传播的重要环境储库[15]

1.5 防治对策

防控Achromobacter xylosoxidans感染的关键在于减少环境暴露、控制传播途径以及加强医院感染管理。由于该菌广泛存在于水环境中,医疗机构应加强供水系统、医疗用水以及相关设备的管理,定期进行环境监测和消毒,避免污染水源成为细菌传播的重要途径[15]。研究表明,医院水系统、透析用水以及潮湿环境均可能成为该菌长期存在的储存库,因此加强环境清洁和消毒措施对于预防感染具有重要意义[2]

对于临床患者,应根据药敏试验结果选择合适的抗菌药物进行治疗,避免经验性用药导致耐药性增加。对于囊性纤维化患者、免疫功能低下患者以及长期住院患者等高危人群,应加强感染监测,及时发现并处理感染病例。同时,在医疗操作过程中应严格执行无菌操作规范,加强导管、呼吸设备等医疗器械的消毒管理,以降低医院获得性感染风险[3, 15]

参考文献

[1]Yabuuchi Eiko, Ohyama Akio. Achromobacter xylosoxidans n. sp. from Human Ear Discharge. Japanese Journal of Microbiology, 1971, 15: 477–81.

[2]Isler B., Kidd T. J., Stewart A. G., et al. Achromobacter Infections and Treatment Options. Antimicrob Agents Chemother, 2020, 64.

[3]Cameron L. C., Bonis B., Phan C. Q., et al. A putative enoyl-CoA hydratase contributes to biofilm formation and the antibiotic tolerance of Achromobacter xylosoxidans. NPJ Biofilms Microbiomes, 2019, 5: 20.

[4]Croxatto A., Prod’hom G., Greub G. Applications of MALDI-TOF mass spectrometry in clinical diagnostic microbiology. FEMS Microbiol Rev, 2012, 36: 380–407.

[5]王浩东, 张嘉宇, 钱灿灿 等. 敌草隆降解菌SL-6的筛选鉴定及降解条件优化. 华南农业大学学报, 2022, 43(1): 94–101.

[6]Nielsen S. M., Penstoft L. N., Nørskov-Lauritsen N. Motility, Biofilm Formation and Antimicrobial Efflux of Sessile and Planktonic Cells of Achromobacter xylosoxidans. Pathogens, 2019, 8.

[7]胡志旭. 木糖氧化无色杆菌SL-6对敌草隆的生物降解和适应机制的研究; 石河子大学, 2024.

[8]Spilker Theodore, Vandamme Peter, LiPuma John J. A Multilocus Sequence Typing Scheme Implies Population Structure and Reveals Several Putative Novel Achromobacter Species. Journal of Clinical Microbiology, 2012, 50: 3010–5.

[9]Strnad H., Ridl J., Paces J., et al. Complete genome sequence of the haloaromatic acid-degrading bacterium Achromobacter xylosoxidans A8. J Bacteriol, 2011, 193: 791–2.

[10]Schoch Paul E., Cunha Burke A. Nosocomial Achromobacter xylosoxidans Infections. Infection Control & Hospital Epidemiology, 1988, 9: 84–7.

[11]Lambiase A., Catania M. R., Del Pezzo M., et al. Achromobacter xylosoxidans respiratory tract infection in cystic fibrosis patients. Eur J Clin Microbiol Infect Dis, 2011, 30: 973–80.

[12]Bador J., Amoureux L., Blanc E., et al. Innate aminoglycoside resistance of Achromobacter xylosoxidans is due to AxyXY-OprZ, an RND-type multidrug efflux pump. Antimicrob Agents Chemother, 2013, 57: 603–5.

[13]Rodrigues E. R., Ferreira A. G., Leão R. S., et al. Characterization of Achromobacter Species in Cystic Fibrosis Patients: Comparison of bla(OXA-114) PCR Amplification, Multilocus Sequence Typing, and Matrix-Assisted Laser Desorption Ionization-Time of Flight Mass Spectrometry. J Clin Microbiol, 2015, 53: 3894–6.

[14]Spear J. B., Fuhrer J., Kirby B. D. Achromobacter xylosoxidans (Alcaligenes xylosoxidans subsp. xylosoxidans) bacteremia associated with a well-water source: case report and review of the literature. J Clin Microbiol, 1988, 26: 598–9.

[15]Reverdy M. E., Freney J., Fleurette J., et al. Nosocomial colonization and infection by Achromobacter xylosoxidans. J Clin Microbiol, 1984, 19: 140–3.

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