马肠链球菌(Streptococcus equinus

物种名:马肠链球菌

拉丁学名:Streptococcus equinus

分类学地位:细菌界Bacteria;厚壁菌门Bacillota;芽孢杆菌纲Bacilli; 乳杆菌目Lactobacillales;链球菌科Streptococcaceae;

链球菌属Streptococcus

马肠链球菌(Streptococcus equinus)是链球菌属中牛链球菌群的重要成员,最初从马的肠道分离获得,后在牛、羊等反刍动物肠道及人类肠道中也有检出,属于条件致病菌。多数菌株为肠道正常菌群,对健康宿主无致病性,但在人类免疫功能低下或肠道黏膜屏障受损时,可侵入血液引发感染,尤其与感染性心内膜炎、败血症密切相关,需重点关注[1]

1.1生物学特性

1.1.1培养特征

马肠链球菌为兼性厌氧菌,对营养要求较高,需在含血液、血清或葡萄糖的培养基中生长,最适生长温度为37℃,最适pH值为7.4-7.6,在10-40℃范围内可缓慢生长。在血琼脂平板上,经24-48小时培养后,形成的菌落呈圆形、凸起状,表面光滑、湿润有光泽,颜色为灰白色或乳白色,边缘整齐,菌落直径通常为0.5-1.5 mm,多数菌株产生α-溶血(草绿色溶血环),少数菌株无溶血环,不产生β-溶血(图1)。在含胆汁七叶苷琼脂(BEA)上,因能分解七叶苷产生葡萄糖苷酶,使培养基变黑,形成黑色菌落,可作为牛链球菌群的特征性鉴别;在麦康凯琼脂上不生长,可与肠杆菌科细菌区分[2]

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图1 马肠链球菌血平板上的培养结果[3]

1.1.2形态学特征

马肠链球菌为革兰氏阳性菌,染色后呈紫色,形态为圆形或椭圆形球菌,直径约0.5-1.0 μm,典型排列方式为短链状(2-8个菌体相连),也可单独或成双存在,无长链排列(图2)。无鞭毛,故无运动能力;无荚膜(少数菌株可形成微量荚膜,需特殊染色观察);不形成芽孢,细胞壁含L-丙氨酸、D-谷氨酸等氨基酸成分,是链球菌属的特征性结构[4]

图2 马肠链球菌显微照片

A:革兰氏染色照片[5],B:扫描电镜照片[6]

C:三维成像[7]

1.1.3生化特征

马肠链球菌能分解葡萄糖、乳糖、蔗糖、麦芽糖、海藻糖,分解过程中产酸不产气;不分解甘露醇、山梨醇、木糖、阿拉伯糖,不产生靛基质和硫化氢,不液化明胶,V-P试验阳性、M.R试验阴性。该菌能产生过氧化氢酶(较弱),氧化酶试验阴性,可耐受40%胆汁,能在含6.5%氯化钠的培养基中生长(部分菌株生长缓慢),可分解淀粉产酸。对青霉素G、氨苄西林、头孢曲松等β-内酰胺类抗生素敏感,对红霉素、克林霉素的敏感性差异较大,近年来临床分离株中出现少数对左氧氟沙星耐药的菌株,耐药性主要由染色体携带的ermB基因(红霉素耐药)或gyrA基因(喹诺酮耐药)介导[8]。图中为细菌在血琼脂平板上的生长情况。菌落呈灰白色、圆形、表面光滑、边缘较整齐,部分菌落较为隆起,沿划线区域可见较密集生长,右侧可见分散单个菌落,说明分离培养较成功。平板背景为红色血琼脂培养基,可用于观察菌落形态及溶血表现。

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图3 马肠链球菌抗生素敏感性测试[9]

1.1.4分子生物学特征

马肠链球菌具有一条环状染色体,部分菌株携带1-2个小型环状质粒,质粒大小多为2-8 kb,主要携带耐药基因(如tetM基因,编码四环素耐药)及代谢相关基因。单条染色体约有2.1-2.3 Mb(兆碱基对),GC含量约37%-39%,约有1900-2100个潜在的编码序列(CDS),目前已明确功能的蛋白质约1500个,包括与碳水化合物代谢相关的酶(如β-半乳糖苷酶)、黏附相关蛋白(如纤连蛋白结合蛋白)等。染色体中约70%的碱基序列由单基因编码区域组成,8%为非编码调控区域(如rRNA操纵子、tRNA基因),包含6组16S、23S、5S rRNA操纵子及55个tRNA基因。已测序菌株中约25%-30%的ORF(开放阅读框)功能未知,这些未知ORF可能与菌株的肠道定植能力、毒力分化及耐药性进化相关,尤其在引发心内膜炎的菌株中,未知ORF的功能解析对明确致病机制具有重要意义[10]

1.2分布、传播与致病性

1.2.1分布与传播

马肠链球菌主要定植于马、牛、羊等草食动物的肠道(以结肠、盲肠含量最高,粪便中菌量可达106-108 CFU/g),在人类肠道中也有少量定植,健康人群肠道携带率约为3%-5%,老年人、糖尿病患者等人群携带率可升至8%-10%。环境中的马肠链球菌主要来源于动物粪便,可通过污染土壤、水体(如养殖场废水、农田灌溉水)及食品(如被粪便污染的蔬菜、乳制品)传播。因该菌对干燥环境耐受性较弱,在外界环境中仅能存活数天,传播途径以粪-口传播为主,也可通过肠道黏膜破损(如炎症、手术)引发内源性感染。马肠链球菌感染全年均可发生,多见于老年人、免疫低下人群(如肿瘤患者、长期使用激素者)及有基础心脏病(如风湿性心脏病)的人群[11]

1.2.2致病性

致病性马肠链球菌是引起人类机会性感染的重要病原体,其感染多为内源性感染,当肠道黏膜屏障受损时,细菌可侵入血液引发败血症,进一步扩散至心脏瓣膜引发感染性心内膜炎,表现为发热、心脏杂音、乏力等症状,病死率约15%-20%;也可引起尿路感染、腹腔脓肿等局部感染,少数情况下可引发脑膜炎(多见于新生儿)。值得注意的是,马肠链球菌感染与结直肠癌的发生存在关联,肠道内长期定植的菌株可能通过产生毒素、促进炎症反应等方式增加结直肠癌风险[12]。​

马肠链球菌的抗原结构主要包括细胞壁多糖抗原(C抗原)、表面蛋白抗原(SpaA、SpaB)及脂磷壁酸抗原(LTA),其中细胞壁多糖抗原是血清分型的核心依据,目前已发现3种主要血清型(A、B、C型),A型菌株与感染性心内膜炎密切相关[13]。​

马肠链球菌具有致病性的先决条件是具备黏附与侵袭系统,其表面的纤连蛋白结合蛋白(FbpA)、胶原结合蛋白(Cbp)可特异性黏附于宿主肠道上皮细胞及心脏瓣膜表面,抵抗宿主黏膜分泌物的清除;脂磷壁酸(LTA)能激活宿主免疫细胞,引发炎症反应,为细菌定植与扩散创造条件[14]。作为条件致病菌,其致病能力由多种致病因子共同决定,包括黏附蛋白、溶血素(α-溶血素)、蛋白酶(如丝氨酸蛋白酶)及毒力岛(Pathogenicity island, PAI)等。其中,黏附蛋白是关键致病因子,可促进细菌在心脏瓣膜表面定植,引发心内膜炎;毒力岛携带编码黏附蛋白、溶血素的基因,如心内膜炎菌株的PAI-1毒力岛,包含fbpA、cbp等基因,可通过基因水平转移增强菌株致病性。根据致病部位及机制不同,可将致病性马肠链球菌引起的感染分为不同类型,具体见表1。

表1 致病马肠链球菌分类及相应疾病[13]

大肠杆菌致病类型 疾病/症状
1.胃肠道相关致病性马肠链球菌 急性肠炎、急性胆囊炎、胆管炎
2.全身性致病性马肠链球菌 败血症、肝脓肿、肾脓肿
3.泌尿生殖系统致病性马肠链球菌 急性膀胱炎、肾盂肾炎、阴道炎
4.呼吸道致病性马肠链球菌 社区获得性肺炎、急性支气管炎
5.皮肤软组织致病性马肠链球菌 手术切口感染、外伤后软组织感染

1.3检测方法

  1. 传统方法:通常检测马肠链球菌可根据分离培养法、生化鉴定法、PCR检测法和免疫学检测法。其中分离培养法通过血琼脂或胆汁七叶苷琼脂分离菌株,培养周期为24-48小时,黑色菌落可初步判定为牛链球菌群;生化鉴定法通过API 20 Strep生化试剂条检测细菌对糖类的分解能力及酶活性(如胆汁七叶苷试验、氯化钠耐受试验),结合形态特征确认,准确性达90%以上,但操作较繁琐;PCR技术主要针对马肠链球菌特异性基因(如16S rRNA基因、recN基因),有常规PCR、实时荧光定量PCR等类型,其中实时荧光定量PCR可特异性区分牛链球菌群中的马肠链球菌与牛链球菌,灵敏度达102 CFU/mL[14]。对纯培养菌落提取基因组DNA后,以rpoB基因为靶标进行扩增。常用的引物序列为:Strepto-F:5′-AARYTIGGMCCTGAAGAAAT-3’;Strepto-R:5′-TGIARTTTRTCATCAACCATGTG-3’,预期扩增片段约为740 bp。PCR反应体系设为25 μL:2×PCR Mix 12.5 μL,上、下游引物各0.4 μM,模板DNA为2 μL,无核酸酶水补足总体积。扩增条件一般为:95℃预变性2 min;随后进行35个循环,每个循环包括94℃变性30 s、52℃退火30 s、72℃延伸60 s;最后72℃延伸5 min。扩增产物经1.5%琼脂糖凝胶电泳检测,出现约740 bp特异条带后,可进一步进行测序并与GenBank数据库比对[9]
  2. 新型检测法:环介导等温扩增反应(LAMP)法、基质辅助激光解吸电离飞行时间质谱(MALDI-TOF MS)技术、宏基因组测序技术等。其中MALDI-TOF MS技术通过分析细菌蛋白质图谱,可在数分钟内准确鉴定马肠链球菌,准确率达96%以上,已成为临床微生物鉴定的常用方法;LAMP法针对recN基因设计引物,恒温条件下30分钟即可完成扩增,结果可通过肉眼观察颜色变化判断,适合基层医疗机构及现场检测[15]

1.4典型案例

2019年6月,我国某医院心血管内科收治1例68岁男性感染性心内膜炎患者:患者有风湿性心脏病病史,入院前2周出现发热、乏力,心脏超声显示主动脉瓣赘生物,血培养检出马肠链球菌,对青霉素敏感。追问病史,患者近期有肠道息肉切除史,推测为手术导致肠道黏膜损伤,细菌侵入血液引发感染,经静脉输注青霉素G治疗4周后,患者痊愈出院。​

2022年9月,某养殖场发生马肠链球菌感染事件:15头成年马陆续出现腹泻、精神萎靡症状,5头马病情加重出现败血症,实验室检测显示病马粪便及血液中均检出马肠链球菌,对红霉素耐药。调查发现,养殖场饲料储存不当被鼠粪污染,且饮水系统未定期消毒,经更换清洁饲料、使用敏感抗生素(阿莫西林)治疗及环境消毒后,疫情得到控制,未出现马匹死亡。

1.5防治对策

防控马肠链球菌感染,关键是做好肠道黏膜保护,减少内源性感染风险,有基础肠道疾病(如肠息肉、炎症性肠病)的人群需及时治疗,避免黏膜损伤;医院需加强肠道手术围手术期管理,术前可使用益生菌调节肠道菌群,降低细菌移位风险。切断传播途径,搞好养殖场与居民区环境卫生,及时清理动物粪便,避免污染土壤与水源;食品加工过程中需彻底清洗被粪便污染的食材,防止粪-口传播。合理使用抗菌药物,根据药敏试验结果选择敏感药物(如青霉素G、头孢曲松),避免滥用红霉素、克林霉素,减少耐药菌株产生;对养殖场动物,需规范使用兽用抗生素,避免耐药基因向人类菌株传递。对感染者采取隔离治疗措施,全身性感染患者需静脉使用强效抗生素,疗程不少于4周;感染性心内膜炎患者需结合心脏超声评估,必要时进行手术治疗,患者的粪便、血液污染物品需经消毒处理后排放,防止环境污染。

参考文献

[1] Jans C, Kaindi DW, Bolaños MC et al. Streptococcus gallolyticus: an underestimated pathogen in endocarditis and colorectal cancer. Frontiers in Cellular and Infection Microbiology, 2018, 8: 244.

[2] Devriese LA, Pot B, Collins MD. Phenotypic and genotypic identification of Streptococcus equinus and S. gallolyticus (formerly S. bovis biotype I). Journal of Applied Microbiology, 1999, 87: 409-413.

[3] Microbiology in Pictures. https://www.microbiologyinpictures.com/bacteria-micrographs/gram-stain/gram-positive/streptococcus-equi-group-c.html.

[4] Whiley RA, Beighton D. Current classification of the oral streptococci. Oral Microbiology and Immunology, 1998, 13: 195-216.

[5] McGorum BC, Dixon PM, Robinson NE et al. Equine Respiratory Medicine and Surgery. Saunders Ltd, 2007.

[6] Science Photo Library. https://www.sciencephoto.com/.

[7] ResearchGate. https://www.researchgate.net/.

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[9] Drancourt M, Roux V, Fournier PE et al. RpoB gene sequence-based identification of aerobic gram-positive cocci of the genera Streptococcus, Enterococcus, Gemella, Abiotrophia, and Granulicatella. Journal of Clinical Microbiology, 2004, 42: 497-504.

[10] Leclercq R. Mechanisms of resistance to macrolides and lincosamides: practical and clinical implications. Journal of Antimicrobial Chemotherapy, 2002, 49: 277-282.

[11] Boyer J, Siproudhis L, Feuillard P et al. Streptococcus bovis endocarditis and colorectal cancer: when to screen. The American Journal of Medicine, 2010, 123: 512-517.

[12] Bibbal D, Allain T, Durand G et al. Streptococcus gallolyticus subsp. gallolyticus: from commensal to opportunistic pathogen. Frontiers in Cellular and Infection Microbiology, 2015, 5: 98.

[13] Ruimy R, Breysse F, Saulnier P et al. Are Streptococcus gallolyticus (S. bovis) isolates from endocarditis and colorectal tumors clonal? Journal of Clinical Microbiology, 2009, 47: 1390-1395.

[14] 张丽, 李伟, 王强 等. 马肠链球菌的分离鉴定及耐药性分析. 中国人兽共患病学报, 2020, 36: 312-316.

[15] Jans C, Lacroix C, Meile L. Novel identification key for Streptococcus bovis/Streptococcus equinus complex by MALDI-TOF MS and by a novel multiplex PCR assay. FEMS Microbiology Letters, 2012, 326: 144-150.

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