埃及血吸虫(Schistosoma haematobium)
物种名:埃及血吸虫
拉丁学名:Schistosoma haematobium
分类学地位:动物界Animalia;扁形动物门Platyhelminthes;
吸虫纲Trematoda;斜睾目Strigeidida;
分体科Schistosomatidae;血吸虫属Schiotosoma
埃及血吸虫(Schistosoma haematobium),又称埃及裂体吸虫,主要寄生于人体的盆腔静脉丛(主要在膀胱静脉丛),常出现终末血尿、膀胱刺激征与尿路梗阻等症状,是引起人的泌尿生殖道疾病的主要致病生物。
1.1生物学特性
1.1.1生活史
埃及血吸虫的成虫寄生于人体泌尿、生殖系统的静脉内,如膀胱静脉丛、骨盆静脉丛、直肠小静脉等,偶尔可寄生于肠系膜门静脉系统,故虫卵可落入膀胱随着尿液排出体外,偶尔落入肠腔的部分虫卵可随粪便排出体外。虫卵必须入水,其内毛蚴才可孵出,在水体中侵入中间宿主水泡螺,在其内发育为尾蚴。尾蚴呈圆形,内有五对穿刺腺,自水泡螺的体内逸出后,在水中自由游动,当人体皮肤接触疫水,尾蚴经皮肤侵入宿主,脱去尾部形成童虫。童虫进入小静脉或淋巴管,随血流或淋巴循环到达右心进入肺循环,再由左心进入体循环到达肠系膜动脉,童虫可穿过毛细血管进入肝门静脉,在肝内门静脉中继续发育,约经20天发育为性成熟成虫。虫体呈雌雄合抱状,逆血流到达肠系膜下静脉、痔上静脉,多移行至膀胱静脉与骨盆静脉丛内产卵,少数虫体有时停留于直肠静脉内,可在直肠静脉与肠系膜下静脉内产卵[1,2]。
1.1.2形态学特征
(1)成虫:雌雄异体,在人体内常呈合抱状。具有口、腹吸盘,位于虫体前端。雄虫长10-15 mm、体宽0.8-1.0 mm,较雌虫粗短,体表全部布满细小结节,结节上有许多小棘,生殖器官有睾丸、输精管、储精囊和生殖孔等,其中睾丸一般为4-5个,椭圆形,排列成串珠状位于腹吸盘以下的虫体背面。雌虫虫体细长,长20-26 mm、宽0.25-0.3 mm,圆柱形,生殖器官有卵巢、子宫、输卵管、卵黄腺、梅氏腺、卵、生殖孔等(图1A)[3]。
(2)虫卵:大小为(80-185) μm×(40-70) μm,纺锤形,无卵盖,卵壳薄厚较均匀,端有小棘(端刺),成熟虫卵淡棕黄色,卵内含一个毛蚴(图1B)[3]。

图1 埃及血吸虫形态结构
A:雌雄合抱[1],B:虫卵[4]
1.1.3生化特征
埃及血吸虫的虫卵孵化依赖低渗透压、15-30℃温度及光照条件,在30℃以上灯光下可在纯尿中孵化,而2.6 μg/ml米替福新作用10分钟即可完全抑制其孵化,未排出的虫卵在宿主体内2-3周会自然死亡。毛蚴体在淡水中可存活1-3周,4-6小时后感染力骤降,适宜生存与感染温度为18-30℃,32-33℃为其在螺体内的最佳发育温度,14℃时发育终止,且对紫外线高度敏感,太阳紫外线照射2小时或紫外灯照射60秒会使其完全丧失活力与感染能力,其趋光性还随温度变化,18℃时背光、13℃时向光。尾蚴在淡水中可存活72 h,8-12 h后钻皮能力下降,15-30℃光照条件下2小时开始从螺体逸出,4-6小时达逸出高峰。成虫为雌雄异体,适应人体37℃的恒温内环境,可在人体静脉内长期存活。整体而言,埃及血吸虫水生发育阶段均对高温、紫外线照射敏感,米替福新能高效抑制其虫卵孵化与水生阶段活性,光照和温度则是调控其孵化、逸出、运动及感染能力的核心环境因子[1]。
1.2分布、传播与致病性
1.2.1分布与传播
埃及血吸虫是人类通过接触受污染的水而感染的。寄生虫栖息在淡水螺中,淡水螺将尾蚴排放到水中。与受污染的水接触后,尾蚴会破坏完整的皮肤并进入膀胱和生殖器区域周围的血管,在那里它们发育成成虫并产卵。这些卵随后通过尿液排出体外,重新污染水并延续传播循环。受感染的淡水螺栖息的河流、湖泊和池塘等水源是这种寄生虫感染的滋生地[1]。
1.2.2致病性
埃及血吸虫病又称泌尿生殖系统血吸虫病,包括泌尿系统和生殖器表现。一旦埃及血吸虫感染在输尿管和膀胱中建立,无痛性血尿是慢性血吸虫病的第一个临床特征。血尿常伴有排尿困难、蛋白尿和尿频。该病通常通过输尿管积水、肾积水、继发感染和细尿毒症阶段进展到终末期[5]。埃及血吸虫病除累及泌尿系统外,还可导致生殖系统病变:在女性可表现为女性生殖器血吸虫病(FGS),引起外阴阴道病变、宫颈炎、异常阴道分泌物、性活动后阴道出血、慢性腹痛,并与不孕、反复流产及更高的HIV感染风险相关;在男性则可表现为男性生殖器血吸虫病(MGS),引起复发性前列腺炎、血精子症、勃起功能障碍及继发性不孕[7]。慢性尿路血吸虫病与膀胱癌的发生有关;肺血吸虫病是由于虫卵迁移到肺部,偶尔可见。
埃及血吸虫可引起泌尿生殖系统异常的主要致病因素为虫卵,可形成虫卵肉芽肿,这与日本血吸虫相似。病变以膀胱最为严重,虫卵可沉积于膀胱浆膜层和肌层,并形成虫卵肉芽肿,其形成机制为细胞免疫介导的迟发型超敏反应。虫卵肉芽肿若致膀胱颈部肌肉组织纤维化与萎缩,可出现排尿困难;若致输尿管或尿道上口增生性改变,常导致输尿管排尿不畅、上尿路不完全性梗阻,引起肾盂积水,并引发细菌性感染(图2);虫卵通过充血的膀胱黏膜可引起血尿。此外,虫卵亦可通过膀胱静脉经下腔静脉进入肺部,大量的虫卵可引起肺小动脉反复栓塞,导致肺循环阻塞与肺动脉高压,肺动脉常呈血管瘤样扩张。虫卵亦可沉积于患者肝脏、直肠黏膜等部位,导致异位损害[6]。

图2 埃及血吸虫感染膀胱组织引起炎症[8]
1.3检测方法
(1)传统方法:通过显微镜检测粪便、膀胱组织活检等。若能观察到炎症反应,需进一步证明埃及血吸虫是否为感染源[3]。
(2)分子生物学方法:Kane等[9]建立了靶向核糖体基因间隔区(intergenic spacer,IGS)的实时荧光定量PCR(qPCR)方法,用于淡水螺体内埃及血吸虫DNA的特异性检测与定量。研究先以通用引物RAKqIGSF/RAKqIGSR扩增约300 bp的IGS片段,再利用ShaemLNA5锁核酸荧光探针识别埃及血吸虫组DNA;必要时结合Acc I限制性内切酶分析,可进一步区分埃及血吸虫、牛血吸虫及其杂交型。该方法最低检测量约为36.85 fg DNA,与传统PCR检测结果的一致性约为91%,可用于低水平感染螺的筛查和传播监测。所用引物与探针序列见表1。
表1埃及血吸虫定量RT-PCR检测引物与探针序列[9]
| 名称 | 序列(5′-3′) |
| 上游引物(RAKqIGSF) | AAAGTCGGAAAAATGAAA |
| 下游引物(RAKqIGSR) | TATGAATGAAATCGGTTA |
| 探针(ShaemLNA5) | [HEX][+A]GC[+A]AACCAATTTT[+T]GCATG[+A]ACAG[+T][BHQ1] |
1.4典型案例
2018年9月,Alzaylaee等[10]在坦桑尼亚姆贝亚地区8处天然淡水点开展环境DNA监测。研究在每个点采集3份表层水样,每份过滤约100~400 mL水,经0.22 μm滤膜富集并提取eDNA,采用物种特异性qPCR检测埃及血吸虫线粒体16S rRNA基因。结果显示,8个采样点中有1个点的水样检出埃及血吸虫eDNA,且该点同时存在经PCR证实感染的Bulinus属水泡螺;水体eDNA结果与感染螺检测结果在7/8(87.5%)采样点一致。该研究属于自然淡水环境中的直接分子监测,提示在居民活动和中间宿主共同存在的水体中可利用qPCR开展传播风险筛查。
2013年夏季,法国科西嘉岛南部Cavu河这一自然淡水游泳区发生泌尿生殖系统血吸虫病本地传播。2014年调查初期报告法国和德国共11例病例,患者均有Cavu河淡水暴露史;随后法国开展大规模筛查,截至2015年3月约有110人至少1项血清学检测阳性,其中26人经尿液检出虫卵确认感染[11]。调查采用血清学、尿液虫卵显微镜检查,并同步开展水泡螺调查和寄生虫分子鉴定。当地一度禁止在Cavu河游泳,并开展病例筛查、公众和医务人员风险告知及螺类监测。该事件的具体污染输入来源尚未被完全确定,但证实自然淡水接触可造成埃及血吸虫持续传播风险。
1.5防治对策
主要预防措施为治疗患者以减少传染源、控制中间宿主水泡螺及避免接触疫水。在流行区,应积极开展卫生健康教育工作,提高居民对本病的认识;做好尿液及粪便管理工作,保护水源,安全供水,尽量减少接触疫水的机会。
参考文献
[1] 汪伟, 洪青标, 梁幼生. 埃及血吸虫的发现及其生物学. 中国血吸虫病防治杂志, 2014, 26: 215-218.
[2] Mohammed AS. The secretory glands of the cercariae of S. haematobium and S. mansoni from Egypt. Annals of Tropical Medicine & Parasitology, 1932, 26(1): 7-22.
[3] 段义农. 现代寄生虫病学. 北京: 人民军医出版社, 2015.
[4] Public Health Image Library (PHIL). https://phil.cdc.gov/Details.aspx?pid=4843.
[5] Barsoum RS. Urinary schistosomiasis: review. Journal of Advanced Research, 2013, 4(5): 453-459.
[6] Barsoum RS. Human schistosomiasis: clinical perspective: review. Journal of Advanced Research, 2013, 4(5): 433-444.
[7] Comelli A, Genovese C, Gobbi F et al. Schistosomiasis in non-endemic areas: Italian consensus recommendations for screening, diagnosis and management by the Italian Society of Tropical Medicine and Global Health (SIMET), endorsed by the Committee for the Study of Parasitology of the Italian Association of Clinical Microbiologists (CoSP-AMCLI), the Italian Society of Parasitology (SoIPa), the Italian Society of Gastroenterology and Digestive Endoscopy (SIGE), the Italian Society of Gynaecology and Obstetrics (SIGO), the Italian Society of Colposcopy and Cervico-Vaginal Pathology (SICPCV), the Italian Society of General Medicine and Primary Care (SIMG), the Italian Society of Infectious and Tropical Diseases (SIMIT), the Italian Society of Pediatrics (SIP), the Italian Society of Paediatric Infectious Diseases (SITIP), the Italian Society of Urology (SIU). Infection, 2023, Vol.51: 1249-1271.
[8] Public Health Image Library (PHIL). https://phil.cdc.gov/Details.aspx?pid=35.
[9] Kane RA, Stothard JR, Rollinson D et al. Detection and quantification of schistosome DNA in freshwater snails using either fluorescent probes in real-time PCR or oligochromatographic dipstick assays targeting the ribosomal intergenic spacer. Acta Tropica. 2013, 128: 241-249.
[10] Alzaylaee H, Collins RA, Rinaldi G et al. Schistosoma species detection by environmental DNA assays in African freshwaters. PLoS Neglected Tropical Diseases, 2020, 14: e0008129.
[11] European Centre for Disease Prevention and Control. Rapid risk assessment: Local transmission of Schistosoma haematobium in Corsica, France. First update. Stockholm: ECDC, 2015.
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