日本血吸虫（Schistosoma japonicum）
物种名：日本血吸虫
拉丁学名：Schistosoma japonicum
分类学地位：真核生物界Eukaryota；扁形动物门Platyhelminthes；
吸虫纲Trematoda；复殖目Digenea；分体科Schistosomatidae；
分体属Schiotosoma
日本血吸虫（Schistosoma japonicum），又称日本分体吸虫，是日本血吸虫病的病原体，该病是一种重要的人兽共患寄生虫病。该虫主要寄生于人和某些哺乳动物的门静脉系统的小血管内，由皮肤接触含尾蚴的疫水而感染。主要病变为虫卵沉积于肠道和肝脏等组织而引起的虫卵肉芽肿。
1.1生物学特性
1.1.1生活史
生活史分成虫、虫卵、毛蚴、母胞蚴、子胞蚴、尾蚴和童虫7个阶段（图1）。日本血吸虫成虫寄生于人及多种哺乳动物的门脉-肠系膜静脉系统。雌虫产卵于静脉末梢内，虫卵主要分布于肝及结肠肠壁组织，虫卵发育成熟后，肠黏膜内含毛蚴虫卵脱落入肠腔，随粪便排出体外。含虫卵的粪便污染水体，在适宜条件下，卵内毛蚴孵出。毛蚴在水中遇到适宜的中间宿主钉螺，侵入螺体并逐渐发育。先形成袋形的母胞蚴，其体内的胚细胞可产生许多子胞蚴，子胞蚴逸出，进入钉螺肝内，其体内胚细胞陆续增殖，分批形成许多尾蚴。尾蚴成熟后离开钉螺，常分布在水的表层，人或动物与含有尾蚴的水接触后，尾蚴经皮肤而感染。尾蚴侵入皮肤，脱去尾部，发育为童虫。童虫穿入小静脉或淋巴管，随血流或淋巴液带到右心、肺，再到达左心，进入肝内门脉系统继续生长、发育，直至性器官初步分化时，雌雄童虫开始合抱，然后移行到肠系膜静脉定居，逐步发育为成虫并交配产卵。在日本血吸虫生活史中，人和其他哺乳动物是终末宿主，钉螺是必需的唯一中间宿主[1]。
图1 日本血吸虫生活史[2]
1.1.2形态学特征
（1）成虫：成虫为雌雄异体。雄虫呈乳白色，体长约为（10-20） mm×（0.5-0.55） mm，前端有发达的口吸盘和腹吸盘，腹吸盘以下，虫体向两侧延展，并略向腹面卷曲，形成抱雌沟，故外观呈圆筒状。雌虫前细后粗，形似线虫，体长（15-26） mm×（0.1-0.3） mm，腹吸盘大于口吸盘，由于肠管充满消化或半消化的血液，故雌虫呈黑褐色，常居留于抱雌沟内，与雄虫合抱[1]。
（2）虫卵：椭圆形，淡黄色，大小约为（70-100） μm×（50-65） μm，卵壳较薄，无盖，在其侧方有一小刺，成熟虫卵的卵内含有毛蚴，构造清晰。毛蚴与卵壳之间有大小不等油滴状的毛蚴分泌物，为可溶性虫卵抗原（图2）[1]。
图2 日本血吸虫虫卵[3]
1.1.3生化特征
光照和水温对日本血吸虫的生活周期有明显影响。白昼有利于尾蚴逸出，黑夜则否；尾蚴昼夜逸出具有周期性，一般以接近中午逸出较多，早晨或黄昏次之，夜间最少；逸出的温度以20-25℃为最适宜。尾蚴的活力与水温有关，在15-25℃经56-60小时仍然不影响其感染力[4]。
1.2分布、传播与致病性
1.2.1分布与传播
日本血吸虫病广泛流行于中国、菲律宾和印尼等地。根据地形、地貌、钉螺生态及流行特点，我国血吸虫病流行区可分为湖沼、水网和山丘三种类型，疫情以湖沼区最为严重[5]。造成传播必须具备下述三个条件：即带虫卵的粪便入水；钉螺滋生；以及人、畜接触疫水。人群普遍易感，男性感染率高于女性，夏、秋季感染机会最多。
1.2.2致病性
日本血吸虫主要致病机理是其在生活史的各阶段都能产生抗原物质，引起病理性的免疫应答。尾蚴穿透宿主皮肤引起局部皮肤发炎，表现为瘙痒和丘疹，称为尾蚴性皮炎，多见于重复感染者。童虫在静脉移行时，因其机械性损伤、代谢物及分泌物的刺激，造成其所经过的器官出现血管炎、毛细血管栓塞和破裂、局部细胞浸润和点状出血，患者可出现发热、咳嗽、咯血、食欲减退等症状。成虫发育所脱落的表膜、分泌物和排泄物在宿主体内可形成免疫复合物，引起Ⅲ型超敏反应。虫卵由于毛蚴分泌可溶性虫卵抗原（SEA）物质，渗入周围组织，引起虫卵周围组织的炎症、坏死，同时诱发淋巴细胞、巨噬细胞、嗜酸性粒细胞、中性粒细胞及浆细胞聚集于虫卵周围，形成虫卵肉芽肿，逐渐发展为纤维化[2]。
日本血吸虫病的主要病变部位在肝脏和肠壁。根据临床表现可分急性、慢性、晚期和异位血吸虫病[2]。
（1）急性血吸虫病：常见于初次感染者，临床表现为发热、淋巴结肿大及肝脾大（图3A）、肝区压痛、腹痛、腹泻等症状。
（2）慢性血吸虫病：急性期未经治疗或治疗未愈及反复轻度感染者，此期临床症状不明显，有的表现为慢性腹泻，肝大较为常见，脾常呈轻度肿大。
（3）晚期血吸虫病：虫卵肉芽肿使肝、肠发生纤维化（图3B）。表现为门静脉高压、腹腔积液、巨脾、胃底静脉曲张等，患者常因合并上消化道出血、肝昏迷而死亡。儿童反复感染血吸虫，可影响脑垂体的分泌功能，导致侏儒症。
（4）异位血吸虫病：见于门脉系统以外的器官或组织的血吸虫虫卵肉芽肿称为异位损害或异位血吸虫病，人体常见的异位损害在肺和脑。
图3 感染日本血吸虫后症状
A：肝脾肿大[6]，B：成熟肝卵周肉芽肿[7]
1.3检测方法
（1）传统方法：通过显微镜检测粪便、尿液或直肠活检样本中的虫卵，血吸虫病的寄生虫学诊断通常依赖于过滤标准化的少量尿液或粪便样本，并在显微镜下计数该体积中的所有卵子，然后将感染水平表示为每10毫升尿液中的卵子或每克粪便中的卵子[6]。
（2）分子生物学方法：文雨松[8]等人基于环境DNA（eDNA）技术，针对日本血吸虫的线粒体细胞色素C氧化酶亚基1（cox1）基因和16S核糖体RNA（16S rRNA）基因设计特异性引物与探针，采用实时荧光定量PCR（qPCR）分别通过SYBR Green染料法和TaqMan探针法，检测水体中日本血吸虫尾蚴的存在，并验证了该方法与假单胞菌属外其他物种未有明显交叉反应，特异性良好。
表1 日本血吸虫qPCR检测引物和探针序列[8]
| 名称 | 序列 |
| cox1-F | 5′-CATTATGTGCTGTCTTTGGGTTC-3′ |
| cox1-R | 5′-AACATCTAACACGACGTGGCAAC-3′ |
| 16S rRNA-F | 5′-TATGGCCTGCCCAATGTTGT-3′ |
| 16S rRNA-R | 5′-ACAAGCCACTAATTAAGAAGCGA-3′ |
| 16S rRNA-探针 | 5′FAM-TGGTCGCAGTTTTACTGTGCTAAGGT-3′BHQ1 |
唐琦[9]等人以日本血吸虫SjR2基因片段为靶基因设计特异性引物进行检测。日本血吸虫虫卵基因组DNA为阳性对照，健康小鼠肝脏DNA为阴性对照。研究结果显示，qPCR检测的阳性率为69.57%，显著高于肝脏匀浆镜检的阳性率。qPCR方法具有高敏感性和可重复性，可作为有条件的实验室对初筛阳性样品的验证手段。
表2 日本血吸虫qPCR检测引物序列[9]
| 名称 | 序列 |
| SjR2_F | 5′-TGCCAGAGCGATGACCATAAAC-3′ |
| SjR2_R | 5′-GCAATGCCTCGCAGTGTGATAG-3′ |
1.4典型案例
2003年中国新闻网报道，八百里的洞庭湖区几乎成了一个“毒湖”，这里气候温润，河网密集，非常适合钉螺的生长，造成了日本血吸虫泛滥，凡接触到湖水的人都有可能感染血吸虫病，沿湖的岳阳、常德、益阳地区已是湖南省血吸虫病的重疾区[10]。
1.5防治对策
日本血吸虫防治遵循“预防为主、防治结合、综合治理、联防联控，人与家畜同步防治”方针。预防上，划分重点与一般防治地区，同步落实农业、水利等工程性防血吸虫举措，开展人兽筛查治疗、钉螺杀灭及粪便无害化处理；重点地区发放预防药物、修建无害化公共厕所，优先推进农业机械化，需明确划定有钉螺地带禁放家畜及引种相关植物，规范药物灭螺。
疫情控制方面，县级以上政府制定血吸虫病应急预案。急性疫情暴发时，及时救治患者、对接触疫水者与家畜预防性药物并处理疫水；各机构按规范监测诊疗，检疫家畜与植物，严禁售卖运输患病家畜和带钉螺植物[11]。
在学术实践中还提出整合防控策略：用农业机械替代水牛耕作以减少感染源，对家畜实行围栏养殖避免粪便污染环境，为渔民等高危人群配备粪便收集容器并安全处置；普及家用自来水与卫生厕所，针对学生、渔民等加强健康宣传教育，结合吡喹酮治疗巩固防控效果。该策略在多县试点后，显著降低人群与钉螺的日本血吸虫感染率，还对土源性线虫感染有防控作用[12]。
参考文献
[1] 夏乾峰. 热带医学概论. 广州: 中山大学出版社, 2020.
[2] Parija SC. Textbook of parasitic zoonoses. Springer, 2022.
[3] Public Health Image Library (PHIL). https://phil.cdc.gov/Details.aspx?pid=649.
[4] 公共卫生科学数据中心. https://www.phsciencedata.cn/Share/wiki/wikiView?id=81df1854-748c-44b0-88f2-d31a62a0453c.
[5] 李杰, 杜映荣, 杨永锐. 常见传染病诊疗手册. 昆明: 云南科技出版社, 2022.
[6] McManus DP, Dunne DW, Sacko M et al. Schistosomiasis. Nature Reviews Disease Primers, 2018, 4: 13.
[7] Dupouy CJ. Helminth infections and their impact on global public health. Springer, 2014.
[8] 文雨松, 徐慧, 邱婷婷 等. 环境DNA技术检测日本血吸虫尾蚴的实验研究. 中国寄生虫学与寄生虫病杂志, 2025, 43:1-4.
[9] 唐琦, 吕超, 王熙 等. 3种方法检测野鼠血吸虫感染的效果评价. 中国寄生虫学与寄生虫病杂志, 2025, 43: 186-191.
[10] 中国新闻网. https://www.chinanews.com.cn/n/2003-09-18/26/348018.html.
[11] 中华人民共和国中央人民政府. https://www.gov.cn/zwgk/2006-04/11/content_251140.htm
[12] Wang LD, Guo JG, Wu XH et al. China’s new strategy to block Schistosoma japonicum transmission: experiences and impact beyond schistosomiasis. Tropical Medicine & International Health, 2009, 14: 1475-83.