细小病毒（Parvoviruses）

物种名：细小病毒

拉丁学名：Parvoviruses

分类学地位：单链DNA病毒界Monodnaviria；科萨病毒门Cossaviricota；

昆托病毒纲Quintoviricetes；细小病毒目Piccovirales；

细小病毒科Parvoviridae；细小病毒属Parvovirus

细小病毒（Parvovirus）属于细小病毒科，病毒颗粒无囊膜，基因组为单链线状DNA。细小病毒的自然感染宿主范围较广，包括脊椎动物、无脊椎动物及人类。由细小病毒引起的细小病毒病正在全球范围内流行，并严重威胁着人与动物的健康^[1]。

1.1生物学特性

1.1.1培养特征

细小病毒基因组为单链DNA，长4.5-5.0kb，是结构最简单的DNA病毒之一。这类病毒复制能力存在缺陷，其本身不带有聚合酶、也不编码此类酶，必须利用宿主细胞的DNA聚合酶来合成病毒DNA。正因如此，细小病毒的DNA复制在很大程度上依赖于宿主细胞的复制系统。当体外进行该病毒培养传代时，不能像一般常规实验那样等到细胞长成单层后才接毒，而必须在细胞培养的同时或最迟在24 h内接种病毒，才能达到使病毒良好增殖的目的。有研究显示，接毒时机对病毒增殖有显著影响，如12 h接毒时病毒滴度可达最高^[2]。

1.1.2形态学特征

细小病毒属于细小病毒科，病毒粒子呈二十面体对称，直径约为20-25 nm。病毒粒子具有一个外壳，由多种蛋白组成，保护内部的遗传物质。在电子显微镜下，细小病毒的形态清晰可见，呈现出典型的病毒粒子结构。

图1 分离到的CPV电镜形态学观察^[3]

1.1.3生化特征

细小病毒的遗传物质为单链DNA，基因组较小，核心含单股线状负链DNA。病毒粒子无囊膜，对脂溶剂及有机溶剂具有很强的抵抗力，但0.5%漂白粉或氢氧化钠5 min即可将其杀死，甲醛蒸汽和紫外线则需要相当长的时间才能将其杀死。该病毒虽具有较强的耐热能力，但高温条件下仍可使其失去活性^[4]。

1.2分布、传播与致病性

1.2.1分布与传播

细小病毒广泛分布于自然界中，能够感染多种哺乳动物和鸟类。病毒通过直接接触、飞沫或粪口途径等方式传播。在人群中，细小病毒感染通常呈现散发或小规模流行的特点。

猪细小病毒的天然宿主只有猪，对猪的感染不分品种、性别、年龄，不同品种、年龄、性别的生猪均能被感染。除初次妊娠的母猪外，其它猪感染临床无明显症状。该病的传播途径主要包括水平传播和垂直传播：水平传播如经口鼻途径的呼吸道、消化道感染；垂直传播如种公猪精液带毒通过交配或人工授精感染母猪、妊娠母猪经胎盘垂直传播给胎儿。猪细小病毒病一年四季均可发病、无明显季节性。该病的主要传染源为感染病毒的母猪和种公猪。由于病毒对外界环境适应力较强、对一般消毒剂具有一定耐受性，在环境中可存活较长时间^[5]。

1.2.2致病性

细小病毒感染可引起多种疾病，如犬细小病毒病、猪细小病毒病等。猪细小病毒病的致病性与感染所处的妊娠阶段密切相关。在怀孕早期30-50日龄感染，胚胎死亡或被吸收，母猪可出现不孕和不规则反复发情；怀孕中期50-60日龄感染，胎儿死亡后形成木乃伊；怀孕后期60-70日龄以上感染，胎儿因具备免疫能力多能存活下来，但可长期带毒。怀孕30-50天感染主要产出木乃伊化胎儿，50～60天感染多出现死产，70天感染出现流产症状，70天后感染多正常产仔但仔猪常带毒。其他猪感染后通常不表现明显临床症状^[6]。

1.3检测方法

（1）犬细小病毒可通过胶体金免疫层析法检测，需用到CPV胶体金抗原检测卡。取血液或粪便、分泌物样品与稀释液混合处理后待检。随后用配套滴管吸取3滴-4滴待检样品，缓慢滴加至样品孔中，红色液体在试纸条上移动时放慢加样，整个加样过程控制在1 min内完成。加样完成后将试纸条平放静置10 min，在20 min内判读结果；对照线与检测线均显色时判定为CPV阳性^[7]。

（2）分子生物学方法：依据GB/T27533-2024，犬细小病毒分子检测含普通PCR与荧光PCR两种方法。PCR法用特异性引物扩增559 bp片段，经电泳成像判读；荧光PCR采用TaqMan探针法，通过荧光信号实时监测扩增，可定量，灵敏度更高。样品经DNA提取后，按体系配比扩增，设阴阳对照，依据条带或Ct值判定结果，适用于确诊与监测，具体引物与探针序列见表1^[8]。

表1犬细小病毒PCR与荧光PCR引物及探针序列^[8]

类型	名称	碱基序列（5’→3’）
PCR上游引物（CPVF）	CPVF	GAATCTGCTACTCAGCCACCAAC
PCR下游引物（CPVR）	CPVR	GTGCACTATAACCAACCTCAGC
荧光PCR上游引物（PrimerF）	PrimerF	GACAATCTTGCACCAATGAG
荧光PCR下游引物（PrimerR）	PrimerR	CCAGATCCTGTAGCTCTTTC
荧光PCR探针（PrimerP）	PrimerP	(FAM)TGGAGCAGTTCAACCAGACGG(BHQ1)

1.4典型案例

细小病毒与水环境相关的典型案例可见于2023—2024年美国得克萨斯州蒙哥马利县的人细小病毒B19污水监测研究。该研究连续采集当地两座污水处理厂的原污水样本，监测了2024年当地一次细小病毒B19暴发期间污水中的病毒DNA浓度。研究结果显示，污水中B19病毒载量与同期社区临床病例数显著相关，且污水病毒浓度高峰与当地胎儿水肿（hydrops fetalis）病例高峰在时间上基本一致。该研究表明，感染者排出的病毒核酸可进入污水系统，使污水成为反映社区传播水平的重要环境监测介质，可用于细小病毒的流行病学监测^[9]。

1.5防治对策

1、加强水源保护：保护水源地免受污染，包括工业废水、农业面源污染和生活污水的排放。定期对水源地进行监测，确保水质安全。

2、完善污水处理系统：建立和完善污水处理设施，确保工业废水和生活污水在排放前经过有效处理，达到排放标准。采用先进的污水处理技术，如生物处理、深度处理等，提高污水处理效率。

3、加强饮用水处理：对饮用水进行严格的净化处理，包括过滤、消毒等步骤，以去除水中的病毒、细菌和其他有害物质。定期对饮用水水质进行检测，确保水质符合卫生标准。

参考文献

[1] 曾倩, 王海军, 裴志花 等. 细小病毒分子生物学检测方法的研究进展. 中国兽医学报, 2019, 39: 183-187.

[2] 吴世妍. 犬细小病毒夹心ELISA及胶体金免疫层析检测法的建立. 南京农业大学, 2018.

[3] 沈海潇, 李鑫, 杨德全 等. 上海地区犬细小病毒病流行情况调查与病毒的分离鉴定. 畜牧与兽医, 2020, 52: 127-131.

[4] 刘占通, 王书丽. 猪细小病毒研究进展. 上海畜牧兽医通讯, 2011, 23-25.

[5] 张成刚, 王立红. 猪细小病毒病的临床特点和防治. 养殖与饲料, 2021, 20: 65-66.

[6] 辽宁省市场监督管理局. 猪细小病毒防治技术规范(DB21/T 2008-2025). 2025.

[7] 国家市场监督管理总局，国家标准化管理委员会. 犬细小病毒病诊断技术(GB/T 20033-2025). 2025.

[8] 国家市场监督管理总局, 国家标准化管理委员会. 犬细小病毒病诊断技术 (GB/T 27533-2024). 2024.

[9] Alessandro Zulli, Rebecca Y Linfield, Dorothea Duong et al. Community Infections Linked with Parvovirus B19 Genomic DNA in Wastewater, Texas, USA, 2023-2024. Emerging Infectious Diseases, 2025, 31: 1442-1445.